Asistida por el imán de la transfección

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Imán asistida por transfección es un transfección método, que utiliza fuerza magnética para ofrecer DNA en las células diana. Por lo tanto, los ácidos nucleicos son primero asociados con nanopartículas magnéticas. Luego, aplicación de unidades de fuerza magnética los complejos de ácido nucleico-parcticle hacia y en las células blanco, donde se libera la carga.[1][2]

Contenido

  • 1 Las nanopartículas magnéticas
  • 2 Entrega de ADN a las células diana
  • 3 Ventajas y perspectivas de la transfección asistida por imanes
  • 4 Referencias

Las nanopartículas magnéticas

Nanopartículas como portadores para los ácidos nucleicos son principalmente óxidos de hierro.[3] Estos óxidos de hierro pueden ser generados por la precipitación de soluciones ácidas de la sal de hierro con adición de bases adecuadas. Las nanopartículas magnéticas tienen un tamaño aproximado de 100 nm y son además recubiertas con biológicos polímeros para permitir la carga de ácidos nucleicos. Las partículas y los ácidos nucleicos forman complejos por interacción iónica de los ácidos nucleicos cargado negativamente y la superficie de la nanopartícula magnética cargada positivamente.

Entrega de ADN a las células diana

El enlace de los ácidos nucleicos cargados negativamente a las partículas de hierro cargados positivamente se produce relativamente rápido. Después de la formación de complejos, las partículas cargadas se incuban junto con las células diana sobre una plancha de imán. Explotación de la fuerza magnética, las partículas de hierro son atraídas rápidamente hacia la superficie de la membrana celular. Absorción celular se produce por endocitosis o pinocitosis. Entregado a las células diana, el ADN se libera en el citoplasma. Las partículas magnéticas se acumulan en endosomas o vacuolas. Con el tiempo, las nanopartículas son degradadas y el hierro entra en el hierro normal metabolismo. Influencia de las funciones celulares por las partículas de hierro no se ha divulgado todavía. Generalmente, en la mayoría de los casos la concentración de hierro aumento en medios de cultivo no conduce a efectos citotóxicos.

Ventajas y perspectivas de la transfección asistida por imanes

Transfección asistida por imanes es un método relativamente nuevo y ahorro de tiempo para introducir ácidos nucleicos en una célula diana con mayor eficiencia. En particular, las líneas celulares mamíferos adherente y cultivos celulares primarios muestran tasas de transfección muy alta. Pero también células de otros organismos y las células de suspensión pueden ser exitosamente transfectadas. Además, una ventaja importante del método es el tratamiento suave de las células. Otros métodos pueden estar limitados por cualquier posibles efectos citotóxicos de la (reactivo de transfección lipídicalipofection) o simplemente por la fuerza aplicada directamente sobre las células (electroporaciónlas células muertas de 20-50%). Además, se incrementa la eficiencia de transfección en muchos casos por el transporte dirigido en un campo magnético, especialmente para bajas cantidades de ácidos nucleicos. En contraste, métodos como lipofection ofrecen solamente estadísticos golpes entre la carga y las células, debido al movimiento tridimensional de las células y transfección agregados en una suspensión líquida. Transfección asistida imán también se puede realizar en presencia de suero, que es un beneficio adicional. Actualmente, hay más de 150 células conocidas a ser transfectadas con éxito. Además, pueden surgir efectos sinérgicos en la eficiencia de la transfección de la posible combinación de lipofection e imán asistida por transfección. En el futuro, esta tecnología podría ser también una estrategia alternativa a los actualmente utilizados vectores virales y no virales en terapia génica y gene transferencia.[4]

Referencias

  1. ^ Tabla et al. magnéticamente había mejorada entrega de ácidos nucleicos. Diez años de magnetofection-avances y perspectivas Adv Drug Deliv Rev. 2011 Nov; 63(14-15):1300-31
  2. ^ http://www.ozbiosciences.com/magnetofection.html
  3. ^ Tablón, C., Schillinger, U., Scherer, f el., Bergemann, C., Remy, S. J., Krötz, f el., Antón, M., Lausier, J. y Rosenecker, J. (2003) Biol Chem, 384, 737-747.
  4. ^ Davis, M. E. (2002) Curr. Opin. Biotechnol., 13, 128-131
http://www.ozbiosciences.com/magnetofection.html

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