Magnetofection

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Magnetofection es un sencillo y muy eficiente transfección método que utiliza campos magnéticos para concentrar las partículas que contienen ácido nucleico en las células diana.[1] Este método intenta unir las ventajas de los populares bioquímicas (catiónicos lípidos o polímeros) y física ()electroporación, pistola de genes) métodos de transfección en un sistema mientras que excepto sus inconvenientes (baja eficiencia, toxicidad). Magnetofection se comercializa por OZ Biosciences https://www.ozbiosciences.com/ y está registrado como una marca registrada.

Contenido

  • 1 Principio de
  • 2 Aplicaciones
  • 3 Mecanismo de
  • 4 Biodistribución de nanopartículas magnéticas
  • 5 Referencias
  • 6 Lectura adicional

Principio de

El principio de magnetofection es asociar ácidos nucléicos catiónicas nanopartículas magnéticas: estos complejos moleculares son luego concentrados y transportados a las células apoyadas por un campo magnético adecuado.[2] De esta manera, la fuerza magnética permite una muy rápida concentración de la dosis todo vector aplicado en las células, para que 100% de las células de entrar en contacto con una dosis importante vector.

Aplicaciones

Magnetofection se ha adaptado a todos los tipos de ácidos nucleicos (ADN, siRNA, dsRNA, shRNA, mRNA, ODN...), sistemas de transfección no viral (reactivos de transfección) y virus. Ha sido probado con éxito en una amplia gama de líneas celulares, duro de transfectar y células primarias.[3][4] Varios optimización y eficiente nanopartciles magnético formulaciones han sido desarrolladas específicamente para aplicaciones de tipos diversos; para ejemplos PolyMag Neo para transfección de DNA, SilenceMag para transfección de siRNA, NeuroMag para transfección de las neuronas primarias y ViroMag para aplicaciones virales.

Mecanismo de

Se hacen las nanopartículas magnéticas de óxido de hierro, que es completamente biodegradable, recubierto con determinadas moléculas propietarias catiónicas varía en las aplicaciones. Su asociación con los vectores de genes (ADN, siRNA, ODN, virus, etc.) se obtiene por agregación coloidal inducida por la sal y la interacción electrostática. Las partículas magnéticas se concentran entonces en las células diana por la influencia de un campo magnético externo generado por los imanes. La absorción del material genético celular se logra por endocitosis y pinocitosis, dos procesos biológicos naturales. En consecuencia, estructura y arquitectura de la membrana permanece intacta, a diferencia de otros métodos de transfección físicos que dañan la membrana celular.

Los ácidos nucleicos son entonces liberados en el citoplasma por diferentes mecanismos dependiendo de la formulación usada: 1) es el efecto de esponja protón causado por polímeros catiónicos en las nanopartículas que promueven endosome osmótica hinchazón, alteración de la endosome membrana y liberación intracelular de la forma de ADN, 2) es la desestabilización del endosome por lípidos catiónicos cubierto en las partículas que liberan el ácido nucleico en las células por el flip-flop de célula lípidos negativos y neutralización de carga y 3) es el mecanismo de la infección viral generalmente cuando se utiliza el virus. Magnetofection trabaja para pilas y tendido para transfectar las células que no divide o lentamente dividiendo, lo que significa que el material genético puede ir a la núcleo de la célula sin división celular. Nanopartículas magnéticas de acoplamiento a vectores del gene de ningún resultado bueno en un dramático aumento de la absorción de estos vectores y eficiencia de transfección en consecuencia alto.

Biodistribución de nanopartículas magnéticas

Las nanopartículas magnéticas catiónicas biodegradables no son tóxicas en las dosis recomendadas y dosis aún más altas. Vectores del gene / complejos de nanopartículas magnéticas se ven en las células después de 10 – 15 minutos eso es mucho más rápido que cualquier otro método de transfección. Después de 24, 48 o 72 horas, la mayoría de las partículas se localiza en el citoplasma, en las vacuolas (estructura rodeadas de membranas en las células) y ocasionalmente en el núcleo.

Referencias

https://www.ozbiosciences.com/magnetofection.html

  1. ^ Tabla C, O Zelphati, O Mykhaylyk (2011). "Magnéticamente mejorado entrega de ácidos nucleicos. Diez años de magnetofection-avances y perspectivas". ADV. Drug Deliv. Rev. 63 (14-15): 1300 – 31. doi:10.1016/j.addr.2011.08.002. PMID21893135.
  2. ^ Scherer F, Antón M, Schillinger U et al (2002). "Magnetofection: mejora y dirigidos a genes por la fuerza magnética in vitro e in vivo". Gene Ther. 9 (2): 102-9. doi:10.1038/sj.gt.3301624. PMID11857068.
  3. ^ Tabla C, O Zelphati, O Mykhaylyk (2011). "Magnéticamente mejorado entrega de ácidos nucleicos. Diez años de magnetofection-avances y perspectivas". ADV. Drug Deliv. Rev. 63 (14-15): 1300 – 31. doi:10.1016/j.addr.2011.08.002. PMID21893135.
  4. ^ Tabla C, Antón M, Rudolph C, Rosenecker J, Krötz F (2003). Mejorar y contra entrega de ácidos nucleicos por la fuerza magnética. Juicio de expertos sobre terapia biológica 3 (5): 745 – 58. doi:10.1517/14712598.3.5.745. PMID12880375.

Lectura adicional

  • Mair, Lamar, et. al (abril de 2009). «Nm 200 tamaño uniforme de las partículas: fabricación y aplicación a la Magnetofection». Diario de la nanotecnología biomédica 5 (2, pp.): 182–191(10). doi:10.1166/JBN.2009.1024. PMC2818021. PMID20055096.

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